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          特殊細胞系培養基

          2011-04-12 [1830]

          培養某一類型細胞沒有固定的培養條件。在MEM中培養的細胞,很可能在DMEM或M199中同樣很容易生長。總之,MEM做粘附細胞培養、RPMI-1640做懸浮細胞培養是一個好的開始,各種目的無血清培養AIM V(12005)培養基(SFM)。
          L-谷氨酰胺在細胞培養中重要嗎?它在溶液中不穩定嗎?
          L-
          谷氨酰胺在細胞培養時是重要的。脫掉氨基后,L-谷氨酰胺可作為培養細胞的能量來源、參與蛋白質的合成和核酸代謝。L-谷氨酰胺在溶液中經過一段時間后會降解,但是確切的降解率一直沒有zui終定論。L-谷氨酰胺的降解導致氨的形成,而氨對于一些細胞具有毒性。
          GlutaMAX-I是什么?培養細胞如何利用GlutaMAX-I?這個二肽有多穩定?
          GlutaMAX-I
          二肽是一個L-谷氨酰胺的衍生物,其不穩定的alpha-氨基用L-丙氨酸來保護。一種肽酶逐漸裂解二肽,釋放L-谷氨酰胺供利用。
          GlutaMAX-I二肽非常穩定,即使在121磅滅菌20分鐘,GlutaMAX-I 二肽溶液有zui小的降解,如果在相同條件下,L-谷氨酰胺幾乎*降解。
          什么培養基中可以省去加酚紅?
          酚紅在培養基中被用來作為PH值的指示劑:中性時為紅色,酸性時為,堿性時為紫色。研究表明,酚紅可以模擬固醇類激素的作用,(特別是雌激素)。為避免固醇類反應,培養細胞,尤其是哺乳類細胞時,用不加酚紅的培養基。由于酚紅干擾檢測,一些研究人員在做流式細胞檢測時,不使用加有酚紅的培養基。
          酚紅在培養基中被用來作為PH值的指示劑:中性時為紅色,酸性時為,堿性時為紫色。研究表明,酚紅可以模擬固醇類激素的作用,(特別是雌激素)。為避免固醇類反應,培養細胞,尤其是哺乳類細胞時,用不加酚紅的培養基。由于酚紅干擾檢測,一些研究人員在做流式細胞檢測時,不使用加有酚紅的培養基。
          如何用臺盼蘭計數活細胞?
          用無血清培養基把細胞懸液稀釋到200~2000個/毫升,在0.1毫升的細胞懸液中加入0.1毫升的0.4%的臺盼蘭溶液。輕輕混勻,數分鐘后,用血球計數板計數細胞。活細胞排斥臺盼蘭,因而染成藍色的細胞是死細胞。
          如何消除組織培養的污染?
          當重要的培養污染時,研究者可能試圖消除或控制污染。首先,確定污染物是細菌、真菌、支原體或酵母,把污染細胞與其它細胞系隔離開,用實驗室消毒劑消毒培養器皿和超凈臺,檢查HEPA過濾器。
          高濃度的抗生素和抗霉菌素可能對一些細胞系有毒性,因而,做劑量反應實驗確定抗生素和抗霉菌素產生毒性的劑量水平。這點在使用抗生素如兩性霉素B和抗霉菌素如泰樂菌素時尤其重要。下面是推薦的確定毒性水平和消除培養污染的實驗步驟。
          1.
          在無抗生素的培養基中消化、計數和稀釋細胞,稀釋到常規細胞傳代的濃度。
          2.
          分散細胞懸液到多孔培養板中,或幾個小培養瓶中。在一個濃度梯度范圍內,把選擇抗生素加入到每一個孔中。例如,兩性霉素B推薦下列濃度,0.25,0.50,1.0,2.0,4.0,8.0 mg/ml。
          3.
          每天觀測細胞毒性指標,如脫落,出現空泡,匯合度下降和變圓。
          4.
          確定抗生素毒性水平后,使用低于毒性濃度2~3倍濃度的抗生素的培養液培養細胞2~3代。
          5.
          在無抗生素的培養基中培養細胞一代。
          6.
          重復步驟4。
          7.
          在無抗生素的培養基中培養4~6代,確定污染是否以已被消除。
          培養基中丙酮酸鈉的作用是什么?
          丙酮酸鈉可以作為細胞培養中的替代碳源,盡管細胞更傾向于以葡萄糖作為碳源,但是,如果沒有葡萄糖的話,細胞也可以代謝丙酮酸鈉。
          Hank's 平衡鹽溶液(HBS)要在空氣中使用,不需要CO2培養箱。原因是什么?Hank's 平衡鹽溶液(HBS)和Earle's平衡鹽溶液(EBS)有什么本質的功能差別?
          HBS
          和 EBS 的主要差別在于碳酸氫鈉的水平,在Eagles (2.2g/L)中比在Hanks (0.35g/L) 中高。碳酸氫鈉需用高水平的CO2平衡,以維持溶液的PH值。Eagles液在空氣水平的CO2 中,溶液會變堿,Hanks液在CO2培養箱中會變酸。如果希望在CO2培養箱中保存組織,需要用Eagles液,。如果僅僅是清洗將要在細胞培養基中儲存的組織,用Hanks液就可以了。
          二價離子抑制胰蛋白酶活性嗎?使用胰蛋白酶時加入EDTA的目的是什么?
          二價離子的確抑制胰蛋白酶活性。EDTA用來螯合游離的鎂離子和鈣離子,以便保持抑制胰蛋白酶的活性。建議胰蛋白酶處理細胞前,用EDTA清洗細胞,以消除來自培養基中所有的二價離子。
          我試用SF900 II時,細胞生長良好,但是我的蛋白產物不如使用Graces 液和10%胎牛血清時效果好。
          如果目的蛋白是一個后期蛋白,它將與蛋白酶一起表達,這些蛋白酶將會作用于目的蛋白。在加有血清的培養基中,這些蛋白酶將作用到血清中的蛋白,從而使目的蛋白產品保持完好。在無血清配方中,蛋白酶作用的*底物是你的目的蛋白。為了避免這一問題,加入一些蛋白酶抑制劑或加入少量的血清(少于1%),讓血清給蛋白酶提供作用底物。
          20°C下配制的緩沖液,在較高或較低的溫度下PH值會改變嗎?
          對于普通使用的緩沖液,PH值隨溫度變化而變化。
          下表列出溫度改變10℃時,PH值的變化情況:
          例如 20下配制PH7.4 Tris緩沖液,40時PH值為 7.4-(2x0.310)=6.78
          緩沖系統 pKa/20 [ Delta]pKa/10
          Mes 6.15 -0.110
          Ada 6.60 -0.110
          Pipes 6.80 -0.085
          Aces 6.90 -0.200
          Bes 7.15 -0.160
          Mops 7.20 -0.013
          Tes 7.50 -0.200
          Hepes 7.55 -0.140
          Tricine 8.15 -0.210
          Tris 8.30 -0.310
          Bicine 8.35 -0.180
          Glycylglycine 8.40 -0.280
          室溫下(25?)配制的Tris-HCl溶液,在37℃使用時PH值是多少?
          緩沖液的PH值隨溫度變化而變化。下表列出了50mM Tris-HC 溶液在4℃,25℃,37℃時,不同的PH值。
          4°C
          25°C
          37°C
          8.1
          7.5
          7.2
          8.2
          7.6
          7.3
          8.3
          7.7
          7.4
          8.4
          7.8
          7.5
          8.5
          7.9
          7.6
          8.6
          8.0
          7.7
          8.7
          8.1
          7.8
          8.8
          8.2
          7.9
          8.9
          8.3
          8.0
          9.0
          8.4
          8.1
          9.1
          8.5
          8.2
          9.2
          8.6
          8.3
          9.3
          8.7
          8.4
          9.4
          8.8
          8.5
          室溫下(25?)配制的Tris-HCl溶液,在37℃使用時PH值是多少?
          緩沖液的PH值隨溫度變化而變化。下表列出了50mM Tris-HC 溶液在4℃,25℃,37℃時,不同的PH值。
          昆蟲細胞培養的zui適PH值和滲透壓是多少?
          生長培養基的PH值對細胞的增殖和病毒或重組蛋白的生產均會產生影響。對于大部分鱗翅類昆蟲細胞系,在PH值 6.0~6.4范圍的大部分應用效果良好。培養鱗翅類昆蟲細胞系時,培養基的zui適滲透壓是345-380mOsm/kg.。為保證可靠和持久的細胞培養方式,減少技術問題,保持PH值和滲透壓在以上所列的范圍之內。
          胰酶消化一個T25瓶的sf9細胞:
           
          1.
          去除培養基。
          2.
          用2ml 1xPBS(足以覆蓋細胞表面)洗滌細胞,去除PBS。
          3.
          加入2ml 1x胰酶EDTA(恰好覆蓋細胞表面)。
          4.
          37 孵育5到10分鐘。在儀器下檢測看到5分鐘后它們正在向上移動。
          5.
          向細胞中加入2ml 細胞培養液,移入錐形管,用2ml培養液洗瓶壁,移入同一錐形管中。(培養基中的FBS終止了胰酶的活性。)
          6.
          離心(1100rpm)沉淀細胞。去除培養基。

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